2021世界燕窝展|上海滋补品展谈燕窝抗氧化，抗炎和抗衰老作用 

衰老是不可避免的，但延缓衰老却是可能的。目前的研究发现，在衰老机体中，除了含有大量自由基，氧化应激水平高之外，许多炎症因子如IL-1、肿瘤坏死因子(tumor necrosis factor，TNF)、干扰素等含量也有所增高。下丘脑内核因子-κβ（NF-κβ）的表达可导致促性腺素释放素(gonadotropin releasing hormone，GnRH)分泌减少，从而促进机体的衰老。通过药物或基因操作抑制NF-κβ可使衰老小鼠趋于年轻化。如长期服用阿司匹林可延长小鼠寿命，促进人体的健康老化。

2021第五届世界燕窝及天然滋补品展览会（简称上海燕博会）于8月25-27日在上海新国际博览中心盛大召开；汇集燕窝及高端滋补品行业上千家品牌汇聚，目前已成为燕窝及滋补品行业影响力、规模、专业性领先的行业盛会，围绕“共创养生新时代，成就滋补大未来”；推动健康行业有序发展。

用HaCaT细胞研究燕窝对氧化应激诱导的基质金属蛋白酶-1(MMP-1)的影响，发现燕窝水提物可以抑制H₂O₂诱导的细胞毒性和消除细胞内的活性氧自由基，下调H₂O₂诱导的MMP-1mRNA、蛋白表达和活性，降低细胞外调节蛋白激酶 （ERK）和c-Jun氨基末端激酶 （JNK）的活化。此外还可以抑制c-Fos和磷酸化c-Jun蛋白的表达。表明燕窝抗衰老的活性与通过下调ERK/JNK和激活蛋白-1（AP-1）的通路来抑制MMP-1的表达有关（Kim，2012）。

燕窝具有抗氧化性，并具有生物活性自由基清除剂的作用。在体外试验中，分子量小于3千道尔顿（1道尔顿Da=1000摩尔质量g/mol）的部分表现出最高的生物活性。燕窝能延缓果蝇的衰老，其主要原因是果蝇体内抗氧化酶活性增加，脂质过氧化产物含量降低（Ghassem，2017）。

通过珍珠燕窝提取液的功效研究发现，提取液明显降低了小鼠脑组织的脂质过氧化作用和大大提高了大鼠红细胞中超氧化物歧化酶的水平，具有消除氧自由基，延缓了衰老作用（Zhang，1994）。燕窝中的不饱和脂肪酸对燕窝的抗氧化作用具有重要贡献（Lee，2019）。

燕窝可以增加非妊娠大鼠的抗氧化剂和总抗氧化剂能力，并降低氧化应激水平（Albishtue，2018）。此外，它还可以通过维持抗氧化剂-活性氧物平衡和调节相关基因的综合机制（Albishtue，2019）。燕窝提取物能抑制TNF-α(肿瘤坏死因子)和一氧化氮的形成，最高抑制率分别为58%和63%，过程中未发现明显的细胞毒副作用（Vimala，2012）。

研究结果表明，与阳性对照辛伐他汀相比，燕窝可部分通过对肝脏抗氧化和抗炎症相关基因的转录调节，减轻高脂饮食引起的氧化应激和炎症。结果还表明，其转录机制可能与燕窝的抗氧化和抗炎作用有关（Zhang，2015）。

参考文献：

Yuwei Dai, Jie Cao, Yuye Wang, Yuejuan Chen, Lin Jiang.（2021）A comprehensive review of edible bird’s nest.Food ResearchInternational，140，Feb. 2021

Kim, K. C., Kang, K. A., Lim, C. M., Park, J. H., Jung, K. S., & Hyun, J. W. (2012). Water extract of edible bird’s nest attenuatedtheoxidative stress-inducedmatrix metalloproteinase-1 by regulating the mitogen-activated protein kinase and activator protein-1 pathway in human keratinocytes. Journal of the Korean Society forApplied Biological Chemistry, 55(3), 347–354.

Ghassem, M., Arihara, K., Mohammadi, S., Sani, N. A., & Babji, A. S.（2017).Identification of two novel antioxidant peptides from edible bird’s nest (Aerodramus fuciphagus) protein hydrolysates. Food and Function, 8(5), 2046–2052.

Zhang, M., Wang, D. S., & Wang, J. (1994). The effect of the ZHENZHU-YANWOextractsonanimal function. Pharmaceutial Biotechnology, 1(2), 49–51.

Lee, T. H., Lee, C. H., Azmi, N. A., Kavita, S., Wong, S., Znati, M., & Jannet, H. B. (2019). Characterization of polar and non-polar compounds of house edible bird’s nest (EBN) from Johor, Malaysia. Chemistry & Biodiversity.

Albishtue, A. A., Yimer, N., Zakaria, M. Z. A., Haron, A. W., Yusoff, R., Assi, M. A., & Almhanawi, B. H. (2018). Edible bird’s nest impact on rats’ uterinehistomorphology, expressions of genes of growth factors and proliferating cell nuclear antigen, and oxidative stress level. Veterinary World, 11(1), 71–79.

Albishtue, A. A., Yimer, N., Zakaria, M. Z. A., Haron, A. W., Babji, A. S., Abubakar, A. A., & Almhanawi, B. H. (2019). Effects of EBN on embryo implantation, plasma concentrations of reproductive hormones, and uterine expressions of genes of PCNA, steroids, growth factors and their receptors in rats. Theriogenology, 126, 310–319.

Albishtue, A. A., Yimer, N., Zakaria, M. Z. A., Haron, A. W., Babji, A. S., Abubakar, A. A., ＆Almhanawi, B. H. (2019). The role of edible bird’s nest and mechanism of averting lead acetate toxicity effect on rat uterus. Veterinary World, 12(7), 1013–1021.

Vimala, B., Hussain, H., & Wan Nazaimoon, W. M. (2012). Effects of edible bird’s nest on tumour necrosis factor-alpha secretion, nitric oxide production and cell viability of lipopolysaccharide-stimulated RAW 264.7 macrophages. Food and Agricultural Immunology, 23(4), 303–314.

Zhang, Y. D., Imam, M. U., Ismail, M., Hou, Z. P., Abdullah, M. A., Ideris, A., & Ismail, N. (2015). Edible bird’s nest attenuates high fat diet-induced oxidative stress and inflammation via regulation of hepatic antioxidant and inflammatory genes. BMCComplementary and Alternative Medicine, 15(1), 1–7.

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