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Western Blot 实验步骤

2022-01-08 12:16 作者:高小小芮  | 我要投稿

组织(小鼠十二指肠)蛋白提取

1.     准备: 研磨珠、离心管、生理盐水、RIPA蛋白裂解液、蛋白酶抑制剂,磷酸化蛋白酶抑制剂,移液枪,枪头,手套,冰,涡旋仪,4℃离心机;

在RIPA蛋白裂解液中加入蛋白酶抑制剂、磷酸化蛋白酶抑制剂(根据说明书确定加入量)

2.     研磨: 提前在离心管中分装300μL RIPA蛋白裂解液并放入2颗研磨珠,称取100mg左右样品,置于匀浆机中充分研磨;

3.     蛋白裂解: 将样品置于冰上裂解2h, 期间于涡旋振荡器上震荡2-3次;

4.     蛋白收集: 将裂解后的样品4℃ 12000rpm离心10min,取上清置于新的EP管中备用。

蛋白质浓度检测及制样

1.     准备: BCA蛋白质浓度检测试剂盒(碧云天),96孔板,生理盐水;

2.     蛋白标准品准备(3个重复):

完全溶解蛋白标准品,浓度为2 mg/mL(生理盐水稀释)

3.     BCA工作液配制:

根据样品数量,试剂A:试剂B=50:1配制适量BCA工作液,充分混匀。BCA工作液室温24小时内稳定。

4.     将标准品按0、1、2、4、8、12、16、20μL加到96孔板的标准品孔中,加标准品稀释液(生理盐水)补足到20μL,相当于标准品浓度分别为0、0.025、0.05、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5mg/ml;

5.     样品稀释:根据预实验摸索样品的最佳稀释倍数,取稀释后的样品20μL加到96孔板中;

6.     向各孔中加入200μL BCA工作液,37℃放置20-30min (也可以室温放置2小时,或60℃放置30分钟。BCA法测定蛋白浓度时,颜色会随着时间的延长不断加深。并且显色反应会因温度升高而加快。如果浓度较低,适合在较高温度孵育,或适当延长孵育时间)。

7.     用酶标仪测定A562,或540-595nm之间的其他波长的吸光度。根据标准曲线和使用的样品体积及稀释倍数计算出样品的蛋白浓度。

Western Blot

1.     电泳样品准备,每个样品总蛋白上20-40μg,计算各个样品所需取样量,并与5×loading buffer混匀至300μL,沸水煮10 min(使用封口膜封住管口以免爆炸),放入冰盒中速冷,分装4份,-80℃保存; 剩余的母液可保存于-80℃,以便下次制样;

2.     SDS-PAGE凝胶配制(SDS-PAGE变性丙烯酰胺凝胶快速制备试剂盒,生工)

a.根据蛋白分子大小,确定制胶浓度浓度。

3.     电泳:

a. 将电泳液倒入电泳槽,玻璃板夹在电泳架上,按照电泳正负极标识对应放入电泳槽内,使电泳液没过胶板下沿,并将胶板内部倒入新配的电泳液,没过胶板上沿,使整个胶板接触电泳液,垂直拔掉梳子防止胶孔破损变形。

b. 点样: 第一块胶的第一个孔点入maker,剩余孔点入10 -20μL样品。快速上样,防止蛋白分子扩散。每个样品的每种蛋白一般做3-4个平行,将大分子量的蛋白与小分子量蛋白可跑同一板胶,相近的蛋白分子量于不同板上跑胶。

c. 对应正负极,盖上盖子并插好电源线,打开电源,设定电压70V,开始电泳约1h后,样品跑到分离胶后加大电压至90-120V,继续电泳,根据不同的目的蛋白分子量,参考maker的位置调整电泳时间。

4.     转膜:

a. 切胶,用切胶板切除浓缩胶,根据maker确定目的蛋白分子量位置切胶,将胶板在电转缓冲液中润湿。

b. 根据滤纸大小裁剪PVDF膜,在甲醇中浸泡5-10min

c. 将海绵和滤纸在电转液中浸透,在电转夹子中按照(黑面,一片海绵,三层滤纸,胶,膜,三层滤纸,一片海绵,白面)的顺序铺平,每放一层用滚子赶走气泡(注意不要使两端滤纸接触造成短路,因而滤纸的大小必须小于PVDF膜的大小),且在整个过程中要防止膜与胶变干。夹好转膜夹,插入电转槽内,侧面放入冰盒,注满电转缓冲液,按正负极标注插入电源,调至180mA并根据目的蛋白的大小设定转膜时间,冰上转膜。

5.     封闭

取出膜,剪裁后按照接触胶面为正面放入孵育盒,用TBST稍洗一次,加入5%脱脂奶粉(1.5g脱脂奶粉+30mlTBST),摇床上封闭2h。

6.     一抗孵育

a. 将脱脂奶粉吸出(切勿触碰到膜),加入TBST清洗一次,根据一抗的稀释比例加入一抗稀释液(牛血清白蛋白)和抗体(注意一定要使膜完全被稀释液浸泡,以防止膜干),摇床孵育30min,4℃静置过夜。

b. 吸出孵育盒中的一抗回收于离心管中,标记抗体名称,回收时间,-20℃保存。

c. TBST洗膜4次,每次在脱色摇床上洗8-10min。

7.     二抗孵育

a. 5%脱脂奶粉和二抗按1:500(4mL+0.8μL)加入孵育盒,没过膜,摇床孵育2h。

b. TBST洗膜4次,每次在脱色摇床上洗10min

8.     显色

等体积混合BeyoECL Star A液和B液,室温放置备用。工作液现配现用。用平头镊子将膜取出,用吸水纸吸去多余液体,切勿接触蛋白面,然后置于保鲜膜上。根据膜的大小,按照每10cm2膜加1mL BeyoECL Star工作液,使工作液均匀覆盖在膜上,放置2-3min,取膜弃去工作液,用吸水纸吸去过多液体,将膜放在两层保鲜膜中间,进行荧光检测。

将膜放入机箱内,设置化学发光,设置连续曝光五张,时间为10s,20s,30s,40s,50s开始拍摄。筛选并调整拍摄的图片,保存。分析试验结果。


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