ZL-02型小动物尾静脉注射显像仪让注射“0”阻力！

2023-03-15 15:34 作者:南五区 0人读过 | 我要投稿

小鼠和大鼠的静脉注射常采用尾静脉注射。鼠尾静脉共有3根，左右两侧和背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。要想实验，首先要固定小鼠，最简单的固定方法就是把小鼠放在盒子里面，让它的尾巴伸在盒盖的外面，用手抓住小鼠尾巴，轻轻往外拽，就可以固定好小鼠了。这种固定方法，听起来是不是很简单！但是如果手法不是很熟练，可够折腾的！

安徽耀坤生物科技有限公司ZL-02型尾静脉注射显像仪避免了这样的顾虑，快装鼠筒采用透明的有机玻璃制成，可以清晰观察到小鼠状态，一改过去大鼠钻入式的装鼠方式，采用后拉尾式得装鼠方式，0型的鼠筒前端可以顺利地将鼠拉入筒内，为了避免鼠在筒内滚转身体，还可用前堵头将其堵在里面，前堵头的孔是根据鼠骨头的生理曲线设计的，能有效地控制鼠的头部，在不影响正常呼吸的同时，还能让鼠的前肢找到一个舒适的位置。

将装好鼠的筒放置于主机上面板的槽上，鼠尾通过开口的档板，将其放置在鼠尾挤压板下板的沟槽里，打开开关，透射灯亮，观察鼠尾血管是否摆正，这时可以根据黄光透射血管的情况调整黄光亮度旋钮，使血管达到最清楚（环境的亮度变化会影响血管的显现情况，建议在较暗的室内操作，应避开强光直射）。

不管使用多大的鼠均应从鼠尾部的下1／3处进针，这样逐渐从下向上打可避开打过的针眼出现漏液现象。因使用动物的品系、大小不同，尾长度也不同，这样就需要调整注射时的位置。

注射使用的针头应在5号针以下，4.5或4号较为合适，过粗的针对血管损伤过大，用后止血困难。目前也有用头皮针后接1毫升注射器用的。这还是为了看回血情况来判断是否进入血管，不管用什么样的针，重要的一点是能看到血管，同时又能看到针在哪里了，这样注射就很容易了，针头进入血管后针头左右摆动一下看血管是否跟着动，这是判断进入血管的最好方法。