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20220712网络Western Blot经验分享

2022-07-12 23:00 作者:菜鸟博士_杂货铺  | 我要投稿

蛋白质印迹法(免疫印迹试验)即Western Blot,是一种常用实验手段,本人对实验前期经验进行总结,希望对各位科研人员有所帮助和借鉴。

01

相关试剂配置

电泳液:Tris 3.03g   

               甘氨酸  18.8g

               SDS  1g

转膜液:Tris 3.03g

               甘氨酸  14.4g

               ddH2O  800ml

               甲醇  200ml

TBST(10×):Tris  12.1g

                      NaCl  40g

                     ddH2O 500ml


02

实验步骤

01

配胶(以雅酶配胶盒为例)

推荐:

7.5%胶:分子量 30以上;

10%胶:分子量20~150;

12.5%胶:分子量50以下;

取玻璃板,长短各一。检查玻璃板是否干净,可用擦镜纸对玻璃板进行清洁。将两玻璃板贴在一起(注:字在上),插入夹内,用大拇指轻推玻璃板,敲一敲桌面,使玻璃杯底部对齐夹紧玻璃板。将塑料垫放于架子上,放上制胶架上。

(注:第一次操作可用水检测是否漏水,否即可将水倒出,用吸水纸吸干水,进行下一步操作。如出现泄露,需检查,从新调整,保证不漏水的情况下方可进行下一步)


下层胶:

AB液:1:1配置(1.0玻璃板两板:5ml:5ml)

促凝剂:100ul

压胶液(异丙醇/无水乙醇):1ml

时间:15分钟以上

(倒出,用去离子水冲洗,滤纸吸干)

上层胶:

AB液:1:1配置(1.0玻璃板两板:2ml:2ml)

促凝剂:40ul

灌入后,根据样本数量不同选择不同梳子类型

(推荐15口梳子,内参更易齐哦!!!)

时间:30分钟以上


02

电泳

将制好的胶板取出,安装于电泳槽上(注:小玻璃板在内侧,如只制作一板胶,则需将假板放于一侧,防止电泳液泄露)。将电泳槽放于电泳盒中,双手分别捏住梳子轻轻拔出,检查胶口是否被胶堵住,如果正常便向电泳槽加电泳液至溢出为止。

根据样本数量,吸取3ul marker于胶板口(建议样本两侧都加3ul,防止边缘效应),并依次加入适量上样液(注:上样时需缓慢注入,样本第一次上样推荐10ul,副口,方便后期调整内参)。然后向电泳槽中加入适量电泳液。

电压120V,所需时间需预实验尝试确定(如果配置本文电泳液,推荐60min),至marker分出所需位置marker后即可停止。


03

转膜(湿转为例)

根据实际情况剪取适合大小的PVDF膜(推荐4cm宽,长:15口一口0.5cm,10口一口1cm)。

(注:需剪去一角确定方向)

取适合大小的水槽,倒入适当的转膜液,将转膜夹(黑板—海绵—厚滤纸,厚滤纸—海绵——透明板)浸入转膜液中,随后取出。

将玻璃板在梳子口这侧撬开,切到适合大小。将厚滤纸(黑板侧)盖在胶上,翻转。小心将胶转到厚滤纸上,将厚滤纸放于海绵(黑板侧)上,调整胶块,使marker与厚滤纸底边垂直。随后在胶上确定加样方向,后期将PVDF膜一角在加第一样侧,方便后期显影确定加样顺序。

将PVDF膜浸入甲醇中1min左右,将PVDF膜放于胶上适合位置(用marker条带确定)。剪掉一角边在加第一样侧,盖在胶上,用滚轮排出气泡,盖上另一侧滤纸,海绵,透明板。将转膜板放于转膜槽内,黑板对黑边。

倒入转膜液,放入冰袋。电流200mA,时间需预实验确定(推荐:75分子量以下120min,75分子量以上180min)。 


(推荐:后面每步之间均需要TBST清洗,5min,4次)


04

封闭

转膜结束后,将整块PVDF膜放入孵育盒,TBST洗5min,倒入封闭液(根据封闭液不同,条带背景不同,封闭不同时间)。


05

切膜

将洗好的膜放在塑料薄膜上,盖上塑料薄膜,防止切割时损坏条带。建议两marker间选择做一个目的蛋白,否在可能出现切掉的情况。如果第一次做建议宽一些,使两marker在膜上即可。

(这步TBST洗一次即可)


06

一抗

加入适当的一抗稀释液,4℃过夜/室温2小时,可回收。

(如果蛋白表达高,建议4℃过夜,效果最好)

(如果蛋白表达量低,建议室温两小时)


07

二抗

加入适当的二抗稀释液,室温2小时


随后显影即可!!!

02

相关问题解答

01

背景深?

如果是第一次做,一抗二抗均是新的,内参背景正常,那么就是一抗问题。

解决方法:①4℃封闭过夜

                  ②换封闭液

                  ③换一抗

如果是第一次背景正常,突然背景深了,建议一抗,二抗,封闭液同时配新的。

最快解决问题,不要浪费时间!!!


02

条带不出?

说明书建议分子量一般没问题,那么要不就是表达量低,要不就是一抗不行,最不可能的就是二抗错了,那就有点傻了!!!

解决方法:①降低一抗稀释比,

                 如原1:1000改为1:200

                  ②提供样本蛋白浓度

                  ③换一家试剂商的一抗

以上三种都不行,别挣扎了,就是没有,何必呢!!!


03

内参齐?

建议在一块胶板上一个样本做两次。

解决方法:加样顺序如下,每口10ul

marker、A、B、C、marker、A、B、C、marker

显影后,算各口灰度值,取各样本所对最大值。

以灰度值最低的样本定为最大上样量10ul。

假设是C样本灰度值是最低,那么A或B加样量=10ul×C灰度值/A或B灰度值


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